NGHIEN CỨU ĐẶC ĐIỂM SINH HỌC CỦA CHỦNG VI TẢO BIỂN DUNALIELLA TERTIOLECTA NY PHÂN LẬP TỪ NƯỚC BIỂN CỦA ĐẢO NAM YẾT THUỘC QUẦN ĐẢO TRƯỜNG SA, VIỆT NAM

Nguyễn Cẩm Hà1, Lê Thị Thơm1, Lưu Thị Tâm1, Ngô Thị Hoài Thu1, Hoàng Thị Minh Hiền1, Nguyễn Trọng Dân2, Vũ Thị Loan2, Đặng Diễm Hồng1,3,
1 Viện Công nghệ sinh học, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
2 Trung tâm Nhiệt đới Việt - Nga
3 Học viện Khoa học và công nghệ, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
Tác giả liên hệ:
Đặng Diễm Hồng
Viện Công nghệ sinh học, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam, Học viện Khoa học và công nghệ, Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
Phòng Công nghệ tảo, Viện Công nghệ sinh học, Viện Hàn lâm Khoa học và công nghệ Việt Nam 18 Hoàng Quốc Việt, Nghĩa Đô, Cầu Giấy, Hà Nội
Số điện thoại: 0915343660;  Email: ddhong60vn@yahoo.com

Nội dung chính của bài viết

Tóm tắt

STUDY ON THE BIOLOGICAL CHARACTERISTICS OF MARINE MICROALGA OF DUNALIELLA TERTIOLECTA NY ISOLATED FROM THE SEA WATER OF NAMYIT ISLAND BELONGING TO SPRATLY ISLANDS, VIETNAM

Marine microalgae are an important source of raw materials for the extraction of highly bioactive substances for humans and domestic animals. In this study, the biological characteristics and the ability to grow biomass of green marine microalga of Dunaliella tertiolecta NY isolated from seawater of Namyit Island belonging to Spratly Islands, Vietnam (in May-June, 2021) was presented. Scientific name of the strain Dunaliella tertiolecta NY based on morphological characteristics and analysis of the sequence of rDNA ITS1-5.8S-ITS2 region was identified (with accession number of this gene region of this strain was supplied on the GenBank is OM 101011). At the best conditions for the growth (i.e. Walne medium, initial cell density of 2.0 x 106 cells/mL, growth temperature of 30oC, light intensity of 60 - 100 µmol/m2s, pH 7, salinity of 30-40‰), highest NY strain cell density of 8.63 x 106 cells/mL was obtained after 15 days of culture. The microalga D. tertiolecta NY was also successfully cultured on a pilot scale in the plastic bottles 10 L and closed photobioreactors 20 - 100 L resulting in a high biomass productivity of 285 mg/L/day and a biomass rich in polyunsaturated fatty acids such as gamma - linolenic acid (C18:3 ω-6; 5.07±0.59 % of total fatty acid - TFA), alpha - linolenic acid (ALA, C18:3 ω-3, 61.79±1.98 % of TFA) and stearidonic acid (SDA; C18: 4 ω-3, 1.59±0.65 % of TFA) qualified for the extraction of value bioactive compounds.

Chi tiết bài viết

Tài liệu tham khảo

1. Da Silva M. R. O. B., Moura Y. A. S., Converti A., Porto A. L. F., Marques A. D. A. V. M., Bzerra R. P., Assessment of the potential of Dunaliella microalgae for different biotechnological applications, A systematic review, 2021, 58:102396.
2. Safie S. R. B., Ng Y. K., Yao L., Lee Y. K., Growth bottlenecks of microalga Dunaliella teriolecta in response to an up-shift in light intensity, European Journal of Phycology, 2018, 53(4):509-519.
3. Tang H., Abunasser N., Garcia M., Chen M., Simon N. G. K. Y., Salley S. O., Potential of microalgae oil from Dunaliella teriolecta as a feedstock for biodiesel, Applied Energy, 2011, 88(10):3324-3330.
4. Kutluk T., Lipid productivity of marine microalgae Dunaliella teriolecta in Marmara seawater and Johnson’s media with different salinities and evaluation as a raw material source for biofuel production, Journal of advanced research in natural and applied sciences, 2021, 7(2):266-273.
5. Chen H., Qiu T., Rong J., He C., Wang Q., Microalgal biofuel revisited: an informatics-based analysis of developments to date and future prospects, Applied Energy, 2015, 155:585-598.
6. Đặng Diễm Hồng, Nuôi trồng vi tảo giàu dinh dưỡng làm thực phẩm chức năng cho người và động vật nuôi ở Việt Nam, Bộ sách chuyên khảo Tài nguyên thiên nhiên và môi trường Việt Nam, NXB. Khoa học tự nhiên và Công nghệ, Hà Nội, 2019, tr. 155, 162, 165, 234.
7. White T. J., Bruns T., Lee S., Taylor J., Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics, Academic Press, Inc., New York, N.Y, 1990, p. 315-322.
8. Liu Z., Zhang F., Chen F., High throughput screening of CO2-tolerating microalgae using GasPak bags, Aquatic Biosystems, 2013, 9(1):23.
9. Haddad R., Alemzadeh E., Ahmadi A. R., Hosseini R., Moezzi M., Identification of Chlorophyceae based on 18S rDNA sequences from Persian Gulf, Iran J. Microbiol., 2014, 6(6):437-442.
10. Hoàng Thị Lan Anh, Ngô Thị Hoài Thu, Đặng Diễm Hồng, Định tên một số chủng vi tảo biển phân lập từ vùng biển Hải Phòng và Nha Trang dựa trên hình thái tế bào và phân tích 18S rRNA, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2010, 8(3):387-396.
11. Bligh E. G., Dyer W. J., A rapid method for total lipid extraction and purification, Can. J. Biochem. Physiol., 1959, 37(8):911-917.
12. Bradford M. M., A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding, Anal. Biochem., 1976, 72(1-2):248-254.
13. Sun L., Ren L., Zhuang X., Ji X., Yan J., Huang H., Differential effects of nutrient limitations on biochemical constituents and docosahexaenoic acid production of Schizochytrium sp., Bioresour. Technol., 2014, 159:199-206.
14. Teodoresco E. C., Organisation et développement du Dunaliella, nouveau genre de Volvocacée-Polyblepharidée, Beihefte zum Botanischen Centralblatt, 1905, 18(1):215-232.
15. Hejazi M. A., Barzegari A., Hosseinzadeh N. G., Hejazi M. S., Introduction of a novel 18S rDNA gene arrangement along with distinct ITS region in the saline water microalga Dunaliella, Saline Systems, 2010, 6(1):1-11.
16. Hamed I., Ak B., Isik O., Uslu L., The effects of salinity and temperature on the growth of Dunaliella sp. isolated from the salt lake (Tuz Golu), Turkey, Turkish journal of fisheries and aquatic sciences., 2017, 17(7):1367-1372.
17. Chagas A. L., Rios A. O., Jarenkow A., Marcílio N. R., Ayub M. A., Rech R., Production of carotenoids and lipids by Dunaliella tertiolecta using CO2 from beer fermentation, Process Biochemistry, 2015, 50(6):981-988.
18. Hopkins T. C., Graham E. J. S., Schuler A. J., Biomass and lipid productivity of Dunaliella tertiolecta in a produced water-based medium over a range of salinities, Journal of applied phycology, 2019, 31(6):3349-3358.
19. Sui Y., Vlaeminck S. E., Effects of Salinity, pH and Growth Phase on the Protein Productivity by Dunaliella salina, Journal of Chemical Technology & Biotechnology., 2019, 94(4):1032-1040.
20. Ahmed R. A., He M., Aftab R. A., Zheng S., Nagi M., Bakri R., Wang C., Bioenergy application of Dunaliella salina SA 134 grown at various salinity levels for lipid production, Scientific Reports, 2017, 7(1):1-10.